Fret 荧光共振能量转移

对于分子生物学来讲，生物分析手段的发展，是阐明机理的必要条件。在研究分子间相互作用的道路上，人们不断      探索，总结出很多方法，免疫技术，晶体衍射，核磁共振等。1948 年，荧光共振能量转移（Fluorescence resonance energy transfer，FRET）理论被首次提出，它可以测定 1.0-6.0nm 距离内分子间的相互作用。1967 年，这一理论得到了实验验证，将 1.0-6.0nm 的距离称为光学尺。二十世纪八十年代出，通过科学家的不断探索，Fret 技术成功运用到蛋白质结构的研究中。自 Fret 荧光共振能量技术诞生以来，已结合多种先进的技术和方法，如电子显微镜，X 射线衍射等，推动了分子生物学检测手段的发展。

作用原理
荧光共振能量转移技术，是采用物理方法去检测分子间的相互作用的方法。   他适用于在细胞正常的生理条件下，验证已知分子间是否存在相互作用。此方法的检测原理如下；

将我们要检测的蛋白（如图 X 和Y），分别偶联上 D 和A 荧光蛋白，D 和A 是一对荧光物质，我们称之为供体（donor）和受体（acceptor）。当用 430nm 的紫光去激发 X 融合蛋白时，它能够产生 490nm 的蓝色荧光；同样，当我们用 490nm 的蓝光去激发 Y 融合蛋白时，它能够产生 530nm 的黄色荧光。（结合图 1） 。

当蛋白 X 和 Y 间没有相互作用时（两者的空间距离>10nm），融合蛋白 X 和 Y 分别产生相应的荧光而被检测到，如果蛋白 X 和 Y 间存在相互作用（两者的空间距离需<10nm，结合图 2），用紫光激发融合蛋白 X 其产生的蓝光会被融合蛋白Y 吸收，从而产生黄色荧光，这时，在细胞内将检测不到蓝色荧光的存在。这时因为能量从 X 融合蛋白转移到了 Y 融合蛋白，这就是荧光共振能量转移技术。

技术难点
一个理想的 Fret 相互作用体系，要求要有一对合适的荧光物质， 即供体的发射光谱与受体的吸收光谱有明显的重叠。且当供体的激发波长时对受体无影响，供体和受体的发射光谱要完全分开，否则容易造成光谱干涉，而使反应      体系不稳定。目前，较为常用的供体-受体分子对，主要有绿色荧光蛋白类（GFPs）和染料类。绿色荧光蛋白类有CFP-YFP，BFP-GFP，BFP-YFP 等，染料类的有 Cy3-Cy5，FITC-Rhodamine 等。且这些荧光物质要能够标记在研究对象上。

应用要求
供体荧光基团和受体荧光基团的空间距离要<10nm； 供体的发射光谱与受体的接收光谱有相当的重叠；
供体、受体分子在量子产率、消光系数、水溶性、抗干扰能力等方面要求较高。

优缺点

应用

• 细胞内分子间的相互作用

• 膜蛋白的研究

• 细胞膜受体蛋白间的相互作用

• 细胞凋亡的研究

• 核酸检测

实验流程简述

• 以荧光物质 CFP（供体）-YFP（受体）为例，检测 AB 蛋白在细胞内的相互作用。

• 1.细胞培养：根据实验培养特定的细胞用于转染，观察检测分子在细胞内的相互作用；

• 2.细胞转染：构建质粒载体 CFP-A 和 YFP-B，将检测的 AB 蛋白分别偶联上荧光蛋白 CFP 和 YFP，并将两个质粒共转染到培养的细胞内；

• 3.检测 FRET：质粒载体 CFP-A 和 YFP-B 转染细胞 10h、12h、18h、24h、36h、48h、72h 后检测，是否发生 Fret；

• 4.FRET 图像采集： 确定 FRET 配对的激发波长， 蓝光被调谐分别用于探测最大和最小的供体和受体信号， 最大供体信号和最小受体信号对应的波长用于收集双表达细胞的 FRET 信号。调整激光变化，以便获取最大 CFP 信号和最小 YFP 信号的激发光波长，采集供体和受体图像，收集 FRET 信号。每个细胞 FRET 检测重复 3 次，每种转染至少完成 6 个细胞的 FRET 检测;

• 5.FRET 数据处理： 去除 FRET 信号中 DSBT 和 ASBT 的光谱串色信号； 受体通路的 FRET 信号需要对

• 供体受体光谱灵敏度的变化进行矫正、对自发荧光和光学噪声进行矫正； 利用矫正系数对双标定细胞进行象素匹配矫正。